Фрагмент для ознакомления
2
Введение
На протяжении всей нашей истории человек заботился лошади, возможно больше, чем о других домашних животных. Содержанию, уходу, кормлению и поению лошади всегда уделялось особое внимание. Такое отношение к этому животному не случайно. Оно складывалось веками, которые человек вместе с лошадью, в буквальном смысле бок о бок, прошел путь от первых ступеней цивилизации до сегодняшних дней. И, несмотря на то, что лошадь во многих областях человеческой деятельности утратила свое доминирующее положение, в сравнении с другими животными она остается любимым животным для человека.
В таких областях человеческой деятельности как конный спорт, конный туризм, работа в отдаленных регионах, в горных условиях, на пограничных рубежах роль лошади возрастает, и ее поголовье увеличивается. Увеличивается поголовье лошадей и в хозяйствах, в которых они разводятся как продуктивные животные для получения молока, мяса, продуктов создания медицинских препаратов.
Растущий интерес человека к лошади подтверждается созданием новых конно-спортивных комплексов и конюшен как в частном секторе, так и в общественных организациях. Продукты из конины - мясо, кумыс пользуются у населения большим спросом. Неуклонно растет спрос лошадей на международном рынке.
Лошади отличаются необыкновенной выносливостью, неприхотливостью, хорошей приспособленностью к круглогодовому табунному содержанию.
Сап - общая заразная болезнь, свойственная преимущественно лошадям; у человека она протекает то остро, то хронически. На первый план клинической картины выступают явления общего отравления или образование специфических узелков некроза в различных тканях и органах.
Человек чаще заражается при соприкосновении с больными животными, их трупами, шерстью, подстилкой, загрязненными выделениями. Возбудитель проникает в организм через микротравмы на коже и слизистых или через рот посредством загрязненных возбудителем рук, а также аспирационным путем.
Естественная восприимчивость людей невысокая, заболевание возникает в основном на фоне нарушения иммунного статуса организма. Обычно заражения носят профессиональный характер: болеют работники животноводства, лица, связанные с уходом за лошадьми, ослами, мулами, ветеринарные специалисты.
Известны случаи внутрилабораторного заражения воздушно-пылевым путем. Несмотря на отсутствие разработанных методов предохранения и лечения сапа, успешная борьба с ним всё же возможна; она базируется на мероприятиях ветеринарно-санитарного характера.
Современные научные данные о биологии сапной бациллы и изучение эпизоотологических факторов, уясняющих пути и способы распространения инфекции, а также чувствительные биологические методы для распознавания заразы, чрезвычайно облегчают борьбу с сапом. В настоящее время совершенно ясно, что сущность борьбы сводится, с одной стороны, к уничтожению лошадей, способных рассеивать заразу, а с другой - к обособлению всех лошадей, не имеющих клинических признаков сапа, но положительно реагирующих на маллеин.
Мы знаем также, что зараза передаётся, главным образом, через пищеварительный тракт при поедании корма или с пойлом, которые загрязнены больными лошадьми, постоянно выделяющими сапных бацилл. Организация «маллеиновых» хозяйств с последующей концентрацией маллеинщиков в особых районах создаёт благоприятные перспективы и возможности в дальнейшей борьбе за окончательную ликвидацию сапа лошадей.
1. Характеристика заболевания
1.1. Определение болезни, историческая справка
Сап известен с древнейших времен. В XVIII веке было впервые описано заражение сапом человека от больной лошади. В 1882 г. румынский ученый V. Babec впервые обнаружил палочку сапа в гное и срезах тканей больного человека [1].
Через год культура возбудителя была выделена из материалов, взятых у погибшей от сапа лошади. Н.П. Васильев в 1883 г. обнаружил возбудителя этой инфекции в крови больного человека. Важным в истории изучения этого заболевания стало открытие, сделанное русскими ветеринарами в 1891 г. Х.И. Гельман и О.И. Кальнинг независимо друг от друга разработали диагностику сапа методом маллеиновых проб, что до настоящего времени имеет широкое применение во всем мире.
Фрагмент для ознакомления
3
Список литературы
1. Алтухова В.В., Антонов В.А., Ткаченко Г.А. и др. Использование полимеразной цепной реакции для обнаружения возбудителей сапа и мелиоидоза при экспериментальной инфекции. Мол. генет., микробиол. и вирусол. 2007; 3:22-7.
2. Антонов В. А., Илюхин В. И., Храпова Н. П., Прохватилова Е. В., Викторов Д. В., Сенина Т. В., Будченко А. А., Ткаченко Г. А., Алексеева В. В., Захарова И. Б., Савченко С. С., Зинченко О. В., Сорокина Ю. И. Современные подходы к диагностике сапа и мелиоидоза. Идентификация и типирование Burkholderia mallei и Burkholderia pseudomallei // Проблемы особо опасных инфекций. 2012. №2. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/sovremennye-podhody-k-diagnostike-sapa-i-melioidoza-identifikatsiya-i-tipirovanie-burkholderia-mallei-i-burkholderia-pseudomallei (дата обращения: 13.04.2021).
3. Будченко А.А., Илюхин В.И., Викторов Д.В. Сравнительный анализ электрофореграмм суммарных клеточных белков патогенных буркхольдерий. Мол. генет., микробиол. и вирусол. 2005; 2:24-8.
4. Кулаков М.Я., Прохватилова Е.В., Храпова Н.П. Моноклональный эритроцитарный диагностикум для обнаружения возбудителей сапа и мелиоидоза. В кн.: Эколого-эпиде-миологический надзор за природно-очаговыми инфекциями в Северном Прикаспии. Астрахань; 1996. С. 146-7.
5. Онищенко Г.Г., Кутырев В.В, редакторы. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство. М.: «Медицина», «Шико»; 2009. 472 с
6. Прохватилова Е.В., Храпова Н.П. О получении моноклональных люминесцирующих иммуноглобулинов для обнаружения возбудителя мелиоидоза. В кн.: Эколого-эпидемиологи-ческий надзор за природно-очаговыми инфекциями в Северном Прикаспии. Астрахань;1996. С. 147-8.
7. Ряпис Л.А., Илюхин В.И., Вострова Е.И. и др. Лабораторная диагностика клинически значимых видов псевдомонад. Лаб. дело. 1988;12:66-71.
8. Ткаченко Г.А., Антонов В.А., Замараев В.С., Илюхин В.И. Идентификация возбудителей сапа и мелиоидоза с помощью полимеразной цепной реакции. Мол. генет., микробиол. и вирусол. 2003; 3:7-11.
9. Храпова Н.П., Тихонов Н.Г., Рыбкин В.С. и др. Иммунологическая диагностика мелиоидоза. В кн.: Мелиоидоз. Волгоград; 1995. С. 57-68.
10. Antonov V.A., Tkachenko G.A., Altukhova V.V et al. Molecular identification and typing of Burkholderiapseudomallei and Burkholderia mallei: when is enough enough? Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2008; 102(Suppl 1):134-9.
11. Chantratita N., Vesaratchavest M., Wuthiekanun V et al. Pulsed-field gel electrophoresis as a discriminatory typing technique for the biothreat agent Burkholderia mallei. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2006; 74:345-7.
12. Cheng A.C., Currie B.J. Melioidosis: epidemiology, pathophysiology, and management. Clin. Microbiol. Rev. 2005; 2:383-416.
13. Currie B.J., MayoM., AnsteyN.M. etal. A cluster of melioidosis cases from an endemic region is clonal and is linked to the water supply using molecular typing of Burkholderia pseudomallei isolates. Am. J. Trap. Med. Hyg. 2001; 65:177-9.
14. Dharakul T., Songsivilai S., Viriyachitra S. et al. Detection of Burkholderia pseudomallei DNA in patients with septicemic melioidosis. J. Clin. Microbiol. 1996; 34(3):609-14.
15. Duangsonk K., Gal D., Mayo M. et al. Use of a variable amplicon typing scheme reveals considerable variation in the accessory genomes of isolates of Burkholderia pseudomallei. J. Clin. Microbiol. 2006; 44:1323-34.
16. Gilardi G.L. Identification of Pseudomonas and related bacteria In: Glucose nonfermenting Gramnegative bacteria in clinical microbiology. 1978. P. 16-44.
17. Godoy D., Randle G., Simpson A.J. et al. Multilocus sequence typing and evolutionary relationships among the causative agents of melioidosis and glanders Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei. J. Clin. Microbiol. 2003; 41:2068-79.
18. Harvey S.P., Minter J.M. Ribotyping of Burkholderia mallei isolates. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2005; 1:91-7.
19. Holden M.T.G., Titball R.W., Peacock S. et al. Genomic plasticity of the causative agent of melioidosis, Burkholderia pseudomallei. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004; 39:14240-245.
20. Inglis T.J.J., Merritt A., Chidlow G. et al. Comparison of diagnostic laboratory methods for identification of Burkholderia pseudomallei. J. Clin. Microbiolog. 2005; 5:2201-06.
21. Janda J.M., Abbot S.L. Bacterial identification for publication: When is enough enough? J. Clin. Microbiol. 2002; 6:1887-91.
22. Jones S.W., Dobson M.E., Francesconi S.C. et al. DNA assays for detection, identification, and individualization of select agent microorganisms. Croat. Med. J. 2005; 46:522-9.
23. Kaestli M., Mayo M., Harrington G. et al. Sensitive and specific molecular detection of Burkholderia pseudomallei, the causative agent of melioidosis, in the soil of tropical northern Australia. Appl. Environ. Microbiol. 2007; 2:6891-7.
24. Koh T.H., Ng L.S. Y., Ho J.L.F. et al. Automated identification systems and Burkholderia pseudomallei. J. Clin. Microbiol. 2003; 41:1809.
25. Koonpaew S., Ubol M.N., Sirisinha S. et al. Genome fingerprinting by pulsed-field gel electrophoresis of isolates of Burkholderia pseudomallei from patients with melioidosis in Thailand. Acta Trop. 2000; 74:87-191.
26. Kunakorn M., Markham R.B. Clinically practical seminested PCR for Burkholderia pseudomallei quantitated by enzyme immunoassay with and without solution hybridization. J. Clin. Microbiol. 1995;33:2131-5.
27. Layne S.P., Beugelsdijk T.J. High-throughput laboratories for Homeland and National Security. Biosecurity and bioterrorism: biodefence, strategy, practice and science. 2003; 2:123-30.
28. Lew A.E., Desmarchelier P.M. Detection of Pseudomonas pseudomallei by PCR and hybridization. J. Clin. Microbiol. 1994; 32:1326-32.
29. Merritt A., Inglis T.J.J., Chidlow G. et al. PCR-based identification of Burkholderia pseudomallei. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 2006; 5:239-244.
30. Meumann E.M., Gal D., NovakR.T. et al. Clinical evaluation of a type III secretion system real-time PCR assay for diagnosing melioidosis. J. Clin. Microbiol. 2006; 44:3028-30.
31. Nierman W.C., DeShazer D., Kim H.S. et al. Structural flexibility in the Burkholderia mallei genome. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004; 39:14246-251.
32. Novak R.T., Glass M.B., Gee J.E. et al. Development and evaluation of a real-time PCR assay targeting the type III secretion system of Burkholderia pseudomallei. J. Clin. Microbiol. 2006; 44:85-90.
33. Palleroni N.J. Family of Pseudomonadaceae. In: Bergey’s manual of systematic bacteriology. Baltimore; 1984. P. 141-99.
34. Rainbow L., Hart C.A., Winstanley G. Distribution of type III secretion gene clusters in Burkholderia pseudomallei, B. thailand-ensis and B. mallei . J. Med. Microbiol. 2002; 51:374-84.
35. Rattanathongkom A., Sermswan R.W., Wongratanacheewin S. Detection of Burkholderia pseudomallei in blood samples using polymerase chain reaction. Mol. Cell. Probes.1997; 11:25-31.
36. Sirishiha S., Anuntagool N., Dharakul T. et al. Recent developments in laboratory diagnosis of melioidosis. Acta Tropica. 2000; 74:235-45.
37. Sonthayanon P., Krasao P., Wuthiekanun V. et al. A simple method to detect and differentiate Burkholderia pseudomallei and Burkholderia thailandensis using specific flagellin gene primers. Mol. Cell. Probes. 2002; 3:217-22.
38. Supaprom C., Wang D., Leelayuwat C. et al. Development of Real-Time PCR assays and evaluation of their potential use for rapid detection of Burkholderia pseudomallei in clinical blood specimens. J. Clin. Microbiol. 2007; 9:2894-901.
