Фрагмент для ознакомления
2
ВВЕДЕНИЕ
Масс-спектрометрия является мощным аналитическим методом, ис-пользуемым для количественной оценки известных материалов, выявления неизвестных соединений в образце, а также для выяснения структуры и химических свойств различных молекул. Полный процесс включает в себя преобразование образца в газообразные ионы, с или без фрагментации, которые затем характеризуются их массы для зарядки отношения (м/з) и относительного изобилия.
Этот метод в основном изучает влияние ионизирующего энергии на молекулы. Это зависит от химических реакций в газовой фазе, в которой молекулы образца потребляются во время формирования ионных и нейтральных видов.
1. Устройство и принцип работы масс-спектрометров
Масс-спектрометры состоят из четырех основных частей; система обработки для внедрения неизвестного образца в оборудование; ионный источник, в котором производится пучок частиц, характерный для образ-ца; анализатор, который отделяет частицы в зависимости от массы; и де-тектор, в котором собираются и характеризуются разделенные ионные компоненты.
Спектрометр требует столкновения свободный путь для ионов и, следовательно, работает в вакууме или в приближенных к вакууму усло-виях. Система взвеси образца предназначена для минимальной потери ва-куума. Источник ионов создает из образца фрагменты ионов. Существует два вида ионных источников; газо-фазных источников и источников излу-чения.
Газо-фазные источники: образец сначала нагревается до ионизации. Переход в газовую фазу компонентов происходит различными способами. Образец испаряется за пределами источника ионов. Примерами методов ионизации являются химическая ионизация, ионизация электронов и пр.
Масс-спектрометр определяет массу молекулы, измеряя отношение массы к заряду (m / z) ее иона. Ионы образуются, когда нейтральные ча-стицы теряют или набирают заряд. После образования ионы электроста-тически отправляются в масс-анализатор, где они разделяются в соответ-ствии с их m / z и, наконец, обнаруживаются. Результатом ионизации мо-лекул, разделения ионов и обнаружения ионов является спектр, который можно использовать для определения молекулярной массы и даже некото-рой информации о структуре вещества. Можно провести аналогию между масс-спектрометром и призмой, как показано на рис. 2. В призме свет де-лится на составляющие длины волны, которые затем обнаруживаются оп-тическим приемником. Аналогичным образом, в масс-спектрометре гене-рируемые ионы разделяются в масс-анализаторе, подсчитываются и опре-деляются в детекторе ионов (таком как электронный умножитель).
Принципиальное устройство масс-спектрометра
Большинство масс-спектрометров стандартно состоят из четырех ос-новных компонентов (рис. 3): системы ввода пробы, ионизационного устройства, масс-анализатора и ионного детектора. В некоторых приборах сочетаются инжекция пробы и ионизация, в других - масс-анализатор и де-тектор. Однако все молекулы в образце обрабатываются одинаково, неза-висимо от конфигурации прибора. Частицы пробы вводятся через впуск-ную систему. При входе в устройство молекулы преобразуются в ионы в устройстве ионизации, а затем электростатически переносятся на масс-анализатор. Затем ионы разделяются в соответствии с их m / z. Детектор преобразует энергию ионов в электрические сигналы, которые затем от-правляются на компьютер.
Способы ввода образца
Ввод образца был одной из первых проблем масс-спектрометрии. Для анализа массы образца, который изначально находится при атмо-сферном давлении (760 Торр), его необходимо ввести в прибор так, чтобы вакуум внутри последнего оставался практически неизменным (~ 10-6 Торр). Основными методами введения образца являются прямое введение зонда или субстрата, обычно используемое в MALDI-MS, или прямая ин-фузия или инъекция в устройство ионизации, как в методе ESI-MS [1].
Прямое введение: Использование прямого введения зонда / держате-ля (рис. 4) - очень простой способ доставки образца к прибору. Образец сначала помещается на зонд, а затем вводится в зону ионизации масс-спектрометра, обычно через вакуумный клапан. Затем образец подверга-ется необходимым процедурам десорбции, таким как лазерная десорбция или прямое нагрвание, чтобы обеспечить испарение и ионизацию.
Прямая инфузия или инъекция: прямая капиллярная или капилляр-ная колонка используется для переноса образца в газ или раствор. Прямая инфузия также удобна, поскольку позволяет эффективно вводить неболь-шие количества материала в масс-спектрометр без нарушения вакуума. Капиллярные колонки обычно используются, чтобы отличить системы разделения от устройства ионизации масс-спектрометра. Эти системы, включая газовую хроматографию (ГХ) и жидкостную хроматографию (ЖХ), также разделяют различные компоненты раствора, которые важны для масс-анализа. В газовой хроматографии разделение различных ком-понентов происходит в стеклянной капиллярной колонке. Как только пары образца покидают хроматограф, они направляются непосредственно в масс-спектрометр.
Прямой перенос заряженной молекулы в газовую фазу
Перенос соединений, уже загруженных в раствор, легко осуществля-ется путем десорбции или вытеснения заряженных частиц из конденсиро-ванной фазы в газовую фазу. Обычно это делается с помощью MALDI или ESI.
Отрыв электрона. Как следует из названия, расщепление электронов дает молекуле 1+ положительный заряд, когда электрон выбивается, по-этому часто образуются катионы свободных радикалов. Отрыв электронов в основном наблюдается во время электронной ионизации и обычно ис-пользуется для относительно неполярных низкомолекулярных соединений. Также известно, что это часто приводит к образованию большого количе-ства ионов-фрагментов.
Метод ионизации (ЭУ) подходит для нетермолабильных соединений. Молекулы образца в парообразном состоянии бомбардируются быстро движущимися электронами, обычно с энергией 70 эВ. Это приводит к об-разованию ионов. Один электрон с самой высокой орбитальной энергией смещается, и, как следствие, образуются молекулярные ионы. Некоторые из этих молекулярных ионов разлагаются, и образуются фрагментарные ионы. Фрагментация данного иона происходит из-за избытка энергии, не-обходимой для ионизации. Фрагмент ионов может быть нечетным элек-троном или четным электроном. Молекулярные ионы, образующиеся при ионизации электронным ударом, являются нечетными электронными ионами. Ионы нечетных электронных фрагментов образуются прямым расщеплением (например, прямым расщеплением связи С-С). Даже ионы электронных фрагментов часто образуются путем перегруппировки (например, перенос протонов). Образец может быть введен в источник ЭУ с помощью устройства газовой хроматографии, например, в случае сме-сей, или непосредственно с помощью устройства для зондирования твер-дых частиц. Количество, необходимое для эксперимента, обычно меньше микрограмма материала.
Масс-спектры ЭУ в большинстве случаев содержат интенсивные пики ионов фрагментов и гораздо менее интенсивные пики молекулярных ионов. Когда пик молекулярных ионов не наблюдается в масс-спектре, для получения информации о молекулярных ионах можно использовать хими-ческую ионизацию. Одним из полезных правил для определения того, яв-ляется ли ион молекулярным ионом, является правило азота.
Правило азота: Как указано выше, молекулярные ионы, образующи-еся при ионизации ЭУ, являются ионами нечетных электронов. Если их наблюдаемое отношение массы к заряду нечетно, исследуемая молекула содержит нечетное число атомов азота. Если отношение массы к заряду является четным числом, эта молекула не содержит атомов азота или даже атомов азота.
Химическая ионизация
Для химиков-органиков химическая ионизация (ХИ) является осо-бенно полезным методом, когда в массовом спектре ХИ не наблюдается молекулярного иона, а также в случае подтверждения отношения массы к заряду молекулярного иона. Метод химической ионизации использует практически то же устройство источника ионов, что и при электронном ударе, за исключением того, что CI использует плотный источник ионов и газ-реагент. Газообразный реагент (например, аммиак) сначала подверга-ется электронному воздействию. Ионы образца образуются в результате взаимодействия ионов газа реагента и молекул образца. Это явление назы-вается ионно-молекулярными реакциями. Молекулы газа-реагента присут-ствуют в соотношении около 100:1 по отношению к молекулам образца. В процессе КИ образуются положительные и отрицательные ионы. В зави-симости от настройки прибора (напряжения источника, детектора и т. Д.) регистрируются только положительные ионы или только отрицательные ионы.
В ХИ реакции молекул ионов происходят между ионизированными молекулами газа реагента (Г) и летучими нейтральными молекулами (M) для получения ионов. Часто наблюдаются псевдомолекулярные ионы MH+ (режим положительных ионов) или [M-H]-(режим отрицательных ионов). В отличие от молекулярных ионов, полученных методом ЭУ, обнаружение MH+ и [M-H]- происходит с высоким выходом и наблюдается меньшее ко-личество фрагментарных ионов.
2. Определение состава газовой фазы методом газовой хроматографии
Газовая хроматография - масс-спектрометрия является общей ком-бинацией для специфического обнаружения и идентификации химических веществ. Техника газовой хроматографии используется для первоначаль-ного разделения компонентов образца, которые затем вводятся в масс-спектрометр для сортировки в соответствии с их соотношением массы к заряду. Анализ широко используется в фармацевтической и пищевой про-мышленности, но также используется для обнаружения неизвестных об-разцов, например, экологического анализа, судебно-медицинской экспер-тизы, обнаружения пожаров и взрывчатых веществ.
Метод анализа смесей газов и летучих веществ. Разделение основано на различии адсорбции на поверхности твердого носителя (адсорбента). Адсорбция может быть вызвана неспецифическим (ориентационным, ин-дуктивным и дисперсионным) и специфическим (комплексообразование или образование водородной связи) взаимодействиями и зависит от при-роды адсорбента и сорбата.
В качестве адсорбентов используются пористые носители, которые являются химически, физически и термически стабильными; однородная поверхность, равномерное распределение пор по размеру и известная ад-сорбционная активность. Адсорбционная активность зависит от удельной поверхности (определяемой геометрической структурой носителя) и от удельной поверхностной энергии (определяемой химической структурой поверхности). Преимуществами адсорбентов как стационарных фаз явля-ются способность выдерживать высокие температуры, отсутствие фоново-го сигнала при работе с ионизационными детекторами и высокая селектив-ность. Адсорбенты делятся на неорганические, полимерные (органические) и модифицированные.
Среди неорганических адсорбентов особое место занимают сорбенты на основе углеродных материалов. Это неполярные сорбенты, для кото-рых геометрические параметры поверхности играют особую роль в про-цессе разделения. Самая интересная особенность этих материалов - спо-собность разделять структурные изомеры.
Широко используются полярные неорганические сорбенты на основе диоксида кремния. Сорбенты используются для отделения легких углево-дородов. Наиболее разнообразны полимерные сорбенты на основе пори-стых полимеров стирола, дивинилбензола и дивинилбензола. Их можно синтезировать с желаемыми свойствами и очень чистой поверхностью. Это гидрофобные сорбенты, которые слабо удерживают полярные молекулы, содержащие гидроксиаминовые группы. Основная область применения полимерных сорбентов - разделение полярных и химически активных га-зов, а также высокополярных органических соединений; определение воды в органических растворителях и летучих органических загрязнителей в воде.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Масс-спектрометрия становится важным методом анализа биологи-ческих и небиологических макромолекул. Это один из самых чувствитель-ных и точных методов, способный обнаруживать только сотни частиц, уступающий только методам радиационного анализа. Разрешение некото-рых методов достигает 30 000, что означает точность в несколько десятков ppm. Эта точность позволяет проводить изотопный анализ макромолекул, таких как белки, а также определять дефект массы и вычислять общую формулу легких молекул и даже белков, основываясь исключительно на данных молекулярной массы и распределения изотопов.
Фрагмент для ознакомления
3
Список использованной литературы
1. Dole M, Mack LL, Hines RL, Mobley RC, Ferguson LD, Alice MB. Molecular beams of macroions. Journal of Chemical Physics. 1968, 49:5, 2240.
2. Whitehouse CM, Dreyer RN, Yanashita M, Fenn JB. Electrospray interface for liquid chromatographs and mass spectrometers. Anal. Chem. 1985, 57, 675-679.
3. Tanaka K, Waki H, Ido Y, Akita S, Yoshida Y, Yoshida T. Protein and polymer analysis up to m/z 100,000 by laser ionization time-of-flight mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. 1988, 2, 151.
4. Karas M & Hillenkamp F. Laser desorption ionization of proteins with molecular mass exceeding 10,000 Daltons. Anal. Chem. 1988, 60, 2299.
5. Bruins AP. Mechanistic aspects of electrospray ionization. J. Chromatogr. A, 1998, 795, 345-357.
6. Fenn JB, Mann M, Meng CK, Wong SF, Whitehouse CM. Electrospray ionization - principles and practice. Mass Spectrometry Reviews. 1990, 9, 37.
7. McLafferty FW & Turecek F. Interpretation of Mass Spectra. 4th ed. Mill Valley, Calif. : University Science Books, 1993.
8. Cole R (Editor). Electrospray Ionization Mass Spectrometry: Fundamentals, Instrumentation, and Applications. New York: Wiley and Sons, 1997.
9. Cole RB. Some tenets pertaining to electrospray ionization mass spectrometry. J. Mass Spectrom. 2000, 35, 763-772.
10. Kebarle P. A brief overview of the present status of the mechanisms involved in electrospray mass spectrometry. J. Mass Spectrom. 2000, 35, 804-817.
11. Gaskell SJ. Electrospray: principles and practice. J. Mass Spectrom. 2000, 35, 677-688.
12. Cech NB and Enke CG. Practical implications of some recent studies in electrospray ionization fundamentals. Mass Spectrom. Rev. 2001, 20, 362-387.
13. Busch K.L., Glish G.L., McLuckey S.A. Mass Spectrometry/Mass Spectrometry: Techniques and Applications of Tandem. John Wiley & Sons, 1989.
14. Cotter R. Time-Of-Flight Mass Spectrometry: Instrumentation and Applications in Biological Research. Washington, D.C.: ACS, 1997.
15. McCloskey J.A. & Simon M.I. Methods in Enzymology: Mass Spectrometry. Academic Press, 1997.
16. Kinter M. & Sherman NE. Protein Sequencing and Identification Using Tandem Mass Spectrometry. Wiley-Interscience, 2000.